在植物学研究方面，无论是植物的试管内传粉受精技术，植物茎尖脱毒的快速繁殖技术，还是细胞悬浮培养技术，都是立足于植物组织培养基础之上的。植物组织培养技术已广泛应用于农业、生物和医药的研究中。

培养基好比土壤，是植物组织培养中离体材料赖以生存和发展的基地，为植株体外离体培养提供生长所需的物质。预混培养基的出现为广大植物研究学者节省了单独采购，称量，配制等环节近20 次操作，避免原材料批间差、称量误差，而且方便保存，节省了大量人力资源和时间，是提高植物组培环节效率的重要一步。目前，较为常用的培养基有MS、B5、N6等。

PhytoTech是全球知名的植物培养基供应商，公司集研发、生产、销售为一体，产品主要覆盖植物组织培养、植物生物技术与植物科学等领域。特色产品有优质基础培养基、植物凝胶、植物生长调节因子、抗生素等。

为满足多样化的实验需求，PhytoTech 提供 MS、B5、N6 等培养基以及不同营养成分缺陷型培养基。产品以粉末形式提供，包含无机盐和维生素（大量元素和微量元素），能配制相应规格体积的液体培养基。大多数产品不含碳源、生长调节剂和植物凝胶，配置时需单独添加。

PhytoTechMS培养基系列

MS 培养基是 1962 年由 Murashige 和 Skoog 为培养烟草细胞而设计的。特点是无机盐和离子浓度较高，为较稳定的平衡溶液，在配制、贮存、消毒等过程中，即使有些成分略有出入，也不致影响离子间的平衡。其养分的数量和比例较合适，可满足植物的营养和生理需要，广泛地用于植物的器官、花药、细胞和原生质体培养，效果良好， 它的液体培养基用于细胞悬浮培养时能获得明显成功。是目前普遍使用的培养基，有些培养基是由它演变而来的。

PhytoTechB5培养基系列

B5 培养基是 1968 年由 Gamborg 等为培养大豆根细胞而设计的。其主要特点是含有较低的铵，这可能对不少培养物的生长有抑制作用。从实践得知有些植物在 B5 培养基上生长更适宜，如双子叶植物特别是木本植物。

PhytoTechN6培养基系列

N6 培养基是 1974 年朱至清等为水稻等禾谷类作物花药培养而设计的。其特点是成分较简单，KNO3 和(NH4)2SO4 含量高。在国内已广泛应用于小麦水稻及其他植物的花药培养和其他组织培养。

PhytoTech其它培养基系列

除了常规培养基外，为了满足多样化的实验需求，Phytotech还能提供木本植物、兰科植物、景天植物、菊科植物、蕨类植物、胡萝卜、玫瑰、烟草、玉簪属等植物的专用培养基。

PhytoTech培养基定制服务

为了更好地服务全球的植物科研工作者，PhytoTech 除了提供商品化的培养基，还可根据客户需求提供培养基定制、分装及配制等服务。

1. 特殊培养基定制——按照客户提供的培养基配方，精确配制干粉培养基。客户无需四处采购各种培养基的组分， 并可省去繁琐的培养基组分称量操作工作，从而节省宝贵的科研时间；

2. 培养基分装——可将客户所需要的培养基按试验需求分装成即用型的包装，使用时更为方便快捷；

3. 液体培养基配制——可将客户所需要的培养基，按 USP 标准配制成液体培养基。

上海金畔生物科技有限公司做为PhytoTech中国区一级代理商，拥有成熟的服务体系和现货库存，如您对以上产品感兴趣欢迎拨打上海金畔生物科技有限公司全国客服热线021-50837765，或者登陆官方网站www.jinpanbio.cn查询产品详细信息。

植物组织培养是20世纪初发展起来的一门新兴技术，随着这项技术的日益完善，其应用也越来越广泛。但是在组织培养过程中，常常会遇到污染问题使实验无法进行下去，甚至导致整个实验失败，给科研和工厂化生产带来损失。

污染是指在植物组织培养过程中，培养基和培养材料滋生杂菌，最终导致培养失败的现象。常见的污染类型包括：由霉菌引起的真菌性污染、多由外植体带菌引起的细菌性污染、长期多次继代引起的内生菌污染以及农杆菌污染等。面对植物组培污染问题，我们通常采取在培养基中加入适量的抗生素（如青霉素、链霉素、氯霉素等）来抑菌。但是抗生素一般不稳定，遇酸、碱或加热都易分解而失去活性。而且单一抗生素抑菌容易产生抗药性，一旦停止使用，污染率就会显著上升。同时，高浓度的抗生素会影响植物的生长。

图片1

为解决上述问题，我们推荐专业植物组培高效广谱性抗菌剂PPM™，它可以有效预防和清除由于空气、灭菌不彻底、交叉污染、外植体消毒等各种原因导致的植物组培苗的真菌、细菌、内生菌和农杆菌污染。可以加入培养基高温灭菌；而且在合理使用剂量下，不会对植物的生长产生任何影响。

      使用方法如下：

1、      常规污染预防用量：

一般推荐使用浓度为0.05%-0.2%（1L培养基中加入0.5-0.75ml PPM™）；愈伤增殖， 器官形成，胚性组织发育等使用浓度为0.05%-0.075%。

2、      植物内生菌污染处理：

      种子：PPM™不推荐用于直接处理含有大量的细菌或真菌孢子的种子灭菌；对于种子离体萌发，建议先采用传统方法消毒，然后置于含 2-3%PPM™的全培养基础盐溶液中，轻轻搅拌4-12小时，此过程千万不能添加Tween20和调节pH，处理完成以后直接插入含有 PPM™(草本植物0.05-0.1%，木本植物0.2%)的培养基里进行培养。

      外植体：：以 1cm 外植体为例，将外植体置于含 4-5%PPM™的全培养基础盐溶液中，轻轻搅拌4-12小时，此过程千万不能添加 Tween20和调节pH，处理完成以后直接插入含有PPM™(草本植物 0.05-0.1%，木本植物0.2%)的培养基里进行培养。

      块茎，球茎和鳞状物的观赏植物样本：将其整体放入消毒剂中搅拌消毒处理以后， 用水冲洗干净，将材料切成薄片，置于含 4-5%PPM™的全培养基础盐培养液中，轻轻搅拌4-12小时，此过程千万不能添加Tween20 和调节pH，处理完成以后无需冲洗直接插入含有 0.1-0.2%的PPM™的培养基里进行培养。

3、      如果厚的外植体、污染严重的植株、种子等样本经过以上处理仍得不到理想效果，可尝试以下操作：

      将材料浸泡在水中持续搅拌处理(松软组织搅拌1小时，硬实组织搅拌2小时)

      将材料在含50%的PPM™全培养基础盐溶液中搅拌处理5-10分钟，此过程千万不能添加 Tween20 和调节pH

      无需冲洗，将处理过的材料直接加入到培养基中即可。对于真菌污染，可在培养基中加入适当浓度的PPM™。对于真菌细菌混合性污染，建议在培养的第一个月的培养基中加入0.05%-0.2%的PPM™

4、      严重污染材料污染去除与抢救（重污染不超过一周）

      将污染的材料至于流水中用软刷刷洗，然后置于含50% PPM™的无菌水溶液中搅拌5-15分钟；对于细菌或者混合性污染，建议使用 100% PPM™与 0.6g/L 的柠檬酸无菌水溶液按 1：1 混合的低 pH(2.8-3.2)的酸性溶液处理

      处理后的材料无需清洗，直接插入含0.05%-0.25的PPM™的培养基中培养至少一个月以上，其中前10天需要弱光培养

5、      农杆菌的去除

共培养以后，将样本用无菌水清洗，然后将样本浸没在 100% PPM™（补充4X的培养基盐溶液）中处理2分钟，取出后用无菌纸吸干后并置于常用抗性培养基中培养，3 周后，更换到只含有0.05%-0.075% PPM™(无常用抗生素)的培养基中培养。

图片2

      注意事项：

      在所有 PPM™消毒处理外植体的过程中，尽量保证容器的体积足够大，并使外植体材料所有面积与含PPM的处理溶液充分接触，以保证消毒效果；

      如果外植体出现高度氧化现象，不要扔弃，大约50%的外植体在 4-6 周内即可恢复

      50% PPM™ 的处理溶液可以重复使用但是不推荐，因为使用次数和效果受外植体的体积与接种密度的影响。将50% PPM™的处理溶液保存在4ºC可适当延长其活性，一般可使用不超过10次。如果必要，建议配制2份50% PPM™溶液，一份用于外植体消毒内生菌污染，另一份用于消除“培养过程中”的轻度污染材料抢救，第二份溶液在每次处理过后需要用 0.2mm滤器过滤

      如果50%PPM™溶液处理效果不理想，可采用100%PPM™溶液进行处理，处理方法相同，但使用次数不得超过10次。

      产品信息：

图片3

产品已发表文献：

1. Miyazaki J, Tan BH, Errington SG.  Eradication of endophytic bacteria via treatment for axillary buds of Petunia hybrida using Plant Preservative Mixture (PPMTM). PCTOC. 2010;102(3):365-372.
2. Miyazaki J, Tan BH, Errington SG, Kuo JS. Bacterial endophyte in Macropidiafuliginosa: its localisation and eradication from in vitro cultured basal-stem callus. Aust J Bot. 2011;59(4):363-368.
3. Lata H, Chandra S, Khan IA, ElSohly MA. Propagation through alginate encapsulation of axillary buds of Cannabis sativa L. — an important medicinal plant.  Phys and Mol Biol of Plants. 2009;15(1):79-86. 4. Greer SP, Rinehart TA.  Dormancy and Germination In Vitro Response of Hydrangea macrophylla and Hydrangea paniculata Seed to Light, Cold-Treatment and Gibberellic Acid. J. Environ. Hort. 2010;28(1):41–47.
4. Greer SP, Rinehart TA.  Dormancy and Germination In Vitro Response of Hydrangea macrophylla and Hydrangea paniculata Seed to Light, Cold-Treatment and Gibberellic Acid. J. Environ. Hort. 2010;28(1):41–47.
5. Moghaddam S, et al. Optimization of an Efficient Semi-Solid Culture Protocol for Sterilization and Plant Regeneration of Centellaasiatica (L.) as a Medicinal Herb. Molecules. 2011;16(11): 8981-8991
6. Çolgecen H, Koca U, Toker G. Influence of diff erent sterilization methods on callus initiation and production of pigmented callus in ArnebiadensifloraLedeb. Turk J Biol. 2011; 35:513-520
7. Pouvreau J, et al. A high-throughput seed germination assay for root parasitic plants. Plant Methods 2013;9:32
8. Marecik R, Bialas W, Cyplik P, Lawniczak L, Chrzanowski L. Phytoremediation Potential of Three Wetland Plant Species Toward Atrazine in Environmentally Relevant Concentrations. Pol. J. Environ. Stud. 2012;21(3):697-702
9. Pérez Flores J, Aguilar Vega ME, Roca Tripepi R. Assays for the in vitro establishment of Swietenia macrophylla and Cedrelaodorata. Rev. Colomb. Biotecnol. 2012;14(1)
10. Nesterenko-Malkovskaya A, Kirzhner F, Zimmels Y, Armon R. Eichhorniacrassipes capability to remove naphthalene from wastewater in the absence of bacteria. Chemosphere. 2012;87(10):1186-1191.
11. Kieffer M, Fuller MP. In Vitro Propagation of Cauliflower Using Curd Microexplants. Meth Mol Biol. 2013;994:329-339.
12. Kodym A, Temsch E, Bunn E, Delpratt J. Ploidy stability of somatic embryo-derived plants in two ecological keystone sedge species (Lepidospermalaterale and L. concavum, Cyperaceae). Aust J Bot. 2012;60(5):396-404.
13. Peña-Ramírez YJ, et al. Induction of somatic embryogenesis and plant regeneration in the tropical timber tree Spanish red cedar [Cedrelaodorata L. (Meliaceae)]. PCTOC. 2011;105(2):203-209.
14. Haddadi F, Adb Aziz M, Saleh G. Abd Rashid A, Kamaladini H. Micropropagation of Strawberry cv. Camarosa: Prolific Shoot Regeneration from In Vitro Shoot Tips Using Thidiazuron with N6-benzylamino-purine. HortScience. 2010;45(3):453-456.
15. Jimenez VM, Castillo J, Tavares E, Guevara E, Montiel M. In vitro propagation of the neotropical giant bamboo, Guadua angustifolia Kunth, through axillary shoot proliferation. PCTOC. 2006;86:389–395.
16. Compton ME, Koch JM. Influence of Plant Preservative Mixture (PPM) on adventitous organogenesis in Melon, Petunia, and Tobacco. In Vitro Cell. Dev. Biol.- Plant. 2001;37:259-261

上海金畔生物科技有限公司是美国Plant CellTechnology中国代理，为用户提供完善的技术支持与售后服务。

PhytoTechnology Laboratories™ 公司是一家世界著名的，专注于植物组织培养相关试剂、耗材的研发、生产和销售的高科技公司，也是一家通过ISO 9001:2000质量体系认证的植物组培公司，生产和包装按照cGMP标准，所有产品的生产工艺遵循严格的质量监控，每个产品的物理学、化学、生物学特性都经过了严格检测，能够生产出经过组织培养测试的产品，并提供不同包装。

主要优势：
1全球植物科研工作者的主选品牌。
2PhytoTech品牌培养基包含MS、B5、N6等多种类型。
3提供兰科植物组织培养专用培养基、栀子花、蕨类、百合组织培养试剂盒等等。
4产品稳定、质量优
5有竞争力的价格！

上海金畔生物科技有限公司作为PhytoTechnology Laboratories™的独家一级代理商，致力于PhytoTech优秀产品的在中国全面推广，为国内的植物学科研工作者提供最专业的植物组织培养产品。

MS培养基及相关产品

MS培养基是1962年由Murashige和Skoog为培养烟草细胞而设计的。特点是无机盐和离子浓度较高，为较稳定的平衡溶液，在配制、贮存、消毒等过程中，即使有些成分略有出入，也不致影响离子间的平衡。其养分的数量和比例较合适，可满足植物的营养和生理需要，广泛地用于植物的器官、花药、细胞和原生质体培养，效果良好，它的液体培养基用于细胞悬浮培养时能获得明显成功。是目前普遍使用的培养基，有些培养基是由它演变而来的。

B5培养基及相关产品

B5培养基是1968年由Gamborg等为培养大豆根细胞而设计的。其主要特点是含有较低的铵，这可能对不少培养物的生长有抑制作用。从实践得知有些植物在B5培养基上生长更适宜，如双子叶植物特别是木本植物。

N6培养基及相关产品

N6培养基是1974年朱至清等为水稻等禾谷类作物花药培养而设计的。其特点是成分较简单，KNO₃和(NH₄)₂SO₄含量高。在国内已广泛应用于小麦水稻及其他植物的花药培养和其他组织培养。

更多培养基请致电021-50837765上海金畔全国客服热线进行咨询。