Enzo金属基质蛋白酶(MMP)新产品


Enzo金属基质蛋白酶(MMP)新产品

Enzo金属基质蛋白酶(MMP)新产品

金属基质蛋白酶(MMP)新产品

  金属基质蛋白酶(MMP)家族与胞外基质蛋白的降解和生物活性分子的工艺相关 ,是一些正常生理过程所必需的。但是这些蛋白也与很多疾病相关,包括肝硬化、关节炎、肿瘤转移 和慢性心血管疾病等。

  幸运的是,MMPs 的活性受内源性天然抑制剂(TIMPs)的调控。内源性天然抑制剂中,TIMP-1TIMP-2较为有特色,在肿瘤研究中得到公认。

  Enzo  Life Sciences 提供广泛多样MMP相关的产品,包括MMP-9和MMP-2的多种形式:

底物

·         酶原

·         天然蛋白

·         重组蛋白

·         单克隆抗体

·         多克隆抗体

·         MMP药物筛选试剂盒

·         抑制剂

MMP抑制剂的剂量反应曲线
Enzo金属基质蛋白酶(MMP)新产品
NNGH在反应前与MMP酶先进行预孵,加入底物启动反应

Enzo金属基质蛋白酶(MMP)新产品

细胞培养基质 层粘连蛋白511 iMatrix-511

细胞培养基质 层粘连蛋白511
iMatrix-511

  • 产品特性
  • 相关资料
  • Q&A
  • 参考文献

细胞培养基质 层粘连蛋白511                              iMatrix-511细胞培养基质 层粘连蛋白511

iMatrix-511

细胞培养基质 层粘连蛋白511                              iMatrix-511

细胞培养基质 层粘连蛋白511                              iMatrix-511

◆什么是层粘连蛋白511?

细胞培养基质 层粘连蛋白511                              iMatrix-511

  层粘连蛋白是存在于动物基底膜的一种细胞外基质,已知其与细胞粘附和增殖息息相关。本产品是与层粘连蛋白 511-E8 片段有同一序列的重组蛋白,是可以促进各种细胞粘附和伸展的培养基质。

  大阪大学和京都大学共同研究开发,本产品已证明在操作难度非常大的人 iPS 细胞和人 ES 细胞培养中,也可以安全且高效地进行细胞培养。

● 细胞培养的准备非常简单!

● 可用于多种类型的细胞培养!

● 无论分离细胞的状态如何,可实现细胞的高生存率和细胞增殖的高效性!

● 重组蛋白(CHO-S细胞来源),所以混入杂质的危险性低!

● 溶液型试剂,无需溶解,稀释后可直接使用

细胞培养基质 层粘连蛋白511                              iMatrix-511

  层粘连蛋白511 是由 α5 链、β1 链和 γ1 链组成的层粘连蛋白。层粘连蛋白 511-E8 是层粘连蛋白片段,但其具有与层粘连蛋白全长分子相同的 α6β1 整合蛋白连接功能。

  本产品是 Nippi 根据大阪大学和京都大学的专利技术生产贩卖的。

使用方法

  用 PBS(-)稀释本产品,按照 0.1~1.5 μg/cm加入细胞培养器皿中。

  ※由于细胞种类和细胞株的不同、使用的培养基种类不同,添加的最适剂量会有差异,初次使用时,按照 0.5 μg/cm添加培养容器中,逐渐

  调整至最佳使用浓度。

         

  室温下孵育 3 小时,然后去掉溶液。

         

  添加细胞和培养液,进行细胞培养。

● 培养 ES/iPS 细胞时,可进行无饲养层和单细胞继代培养

使用案例

细胞培养基质 层粘连蛋白511                              iMatrix-511

  使用本产品对表皮细胞培养 0.5 小时,对血管内皮细胞培养 1 小时。

  (a) 表皮细胞,培养 0.5 小时
          左(无涂层):大部分细胞未贴壁。
          右(iMatrix):多数细胞贴壁并成伸展状态。

  (b) 血管内皮细胞,培养 1 小时
          左(无涂层):有贴壁的细胞,但大部分多为圆形。
          右(iMatrix):较少观察到圆形细胞,几乎所有的细胞表现出了很好的伸展性。

          实验人员: (株) Nippi BioMatrix 研究所 藤崎

iMatrix-511 与 iMatrix-511 silk 的区别

iMatrix-511

iMatrix-511 silk

生产系统

转基因 CHO-S 细胞

转基因蚕生产系统

提纯材料

CHO-S 细胞培养上清

蚕蛹蛋白

产品等级

实验研究用* *有临床用级别

实验研究用

导入基因

人层粘连蛋白 511-E8 片段

纯度

95% 以上

浓度

0.5 mg/mL

解离常数

10 nM 以下

使用期限

生产后 2 年内

iPS 细胞培养能力

添加 0.5 μg/cm到培养容器中,可用于 iPS 细胞的维持培养

产品列表

产品编号 生产商编号 产品名称 包装
385-07361 892011 iMatrix-511 solution(0.5 mg/mL)
层粘连蛋白511-E8片段,溶液(0.5 mg/mL)

175 µg×2

(350 µL×2)

381-07363 892012

175 µg×6

(350 µL×6)

387-10131 892021 iMatrix-511 Silk
层粘连蛋白511 Silk
175 μg ×6

※ 本页面产品仅供研究用,研究以外不可使用。

点击此处,选择页面中的”iMatrix™ Calculator“计算实验中 iMatrix-511 使用量

点击此处进一步获取文献应用实例

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相关资料


细胞培养基质 层粘连蛋白511                              iMatrix-511

【参考文献系列】iMatrix-511

iMatrix-511,iMatrix-511 silk

Q1. 产品是以什么样的状态销售的?

A1. 产品是以液态销售的。一支试管里密封装有 0.5 mg/mL 浓度的 175 μg 的细胞培养外基质(层粘连蛋白 511-E8 片段)。

※iMatrix-511 的冻干产品已于2015年3月停止生产。

 


Q2. 产品的存储条件和有效期是什么?

A2. 产品的储存条件为,冷藏保存在 2-15°C。(推荐 4°C)

A2. 产品的有效期,请参考下表。


产品

保质期

iMatrix-511

自生产后两年内

iMatrix-511silk

自生产后两年内

iMatrix-511MG

自生产后两年内


※具体的有效期详见产品外包装。

 


Q3. 可以冷冻保存吗?

A3. 不可以冷冻保存。

 


Q4. 产品的纯度是多少?

A4. 纯度为 95% 以上。

 


Q5. 培养 hES/hiPS 细胞时使用什么培养基最好?

A5. 宫崎等的论文(Nature communications, 3(1236), 1-10, 2012)、(Scientific Reports, 7, 41165, 2017)中,使用了以下的培养基。

     ・mTeSR1,TeSR2,TeSR-E8 (STEMCELL Technologies)
     ・Stem Pro hESC SFM (Thermo Fisher Scientific)
     ・StemFit AK03 (Ajinomoto)

     中川等的论文(Scientific Reports, 4(3594), 1-7, 2014)中使用了以下的培养基。

     ・StemFit (Ajinomoto)

     文献中使用的培养基都出现了良好的结果。

 


Q6. 培养 iPS 细胞时,最佳的涂层浓度是多少?

A6. 最佳的涂层浓度根据细胞株的不同也会有所不同。

A6. 最初请从浓度 0.5 μg/cm开始尝试,请根据您使用的细胞株在浓度 0.1~1.5 μg/ cm之间考虑。

A6. 另外,还有文献报道了新的不以涂层包被的添加法。

A6. Miyazaki et al. Scientific Reports, 7, 41165, (2017)


 

Q7. 请教我使用 iMatrix-511 时,培养 iPS 细胞的步骤。

A7. 使用 iMatrix-511 时,ES/iPS 细胞的扩增培养步骤,传代操作,请参考以下的链接。

(扩增培养步骤 )

(传代操作的视频)

 


Q8. 培养 iPS 细胞时,需要 Rock Inhibitor(Y-27632)吗?

A8. 在中川等的论文(Scientific Reports, 4(3594), 2014)中,介绍了只有在传代时添加 Rock Inhibitor,更换培养基的时候不需使用。

 


Q9. 培养 iPS 细胞时可以单细胞传代吗?

A9. 可以。

※使用 iMatrix-511 时,ES/iPS 细胞的扩增培养步骤,传代操作,请参考以下的链接。

(扩增培养步骤 )

(传代操作的视频)

也可以参考中川等的论文(Scientific Reports, 4(3594), 2014)。

 


Q10. 传代时使用什么细胞分离液?

A10. 可使用胰蛋白酶。

※使用 iMatrix-511 时,ES/iPS 细胞的扩增培养步骤,传代操作,请参考以下的链接。

(扩增培养步骤)

(传代操作的视频)

也可以参考中川等的论文(Scientific Reports, 4(3594), 2014)。

 


Q11. 可以使用小鼠的 iPS 细胞吗?

A11. 由于没有小鼠 iPS 细胞的培养数据,所以无法回答。

 


Q12. 这个产品与基质胶有什么不同?

A12. 基质胶含有小鼠EHS肉瘤来源的层粘连蛋白-111。另外还含有层粘连蛋白以外的分子。

A12. iMatrix-511 是将在 CHO-S 细胞中表达的层粘连蛋白 511-E8 片段高度纯化后的重组蛋白。

A12.iMatrix-511silk 是从蚕结的茧中高纯度纯化层粘连蛋白 511-E8 片段的重组蛋白。

A12.已知人ES细胞和 iPS 细胞是通过细胞膜受体(特别是 α6β1整联蛋白)粘附于层粘连蛋白-511。

A12.已知人ES细胞和 iPS 细胞对层粘连蛋白-511 具有高粘附活性。这使得用 iMatrix-511/iMatrix-511silk 可以使 iPS 细胞在单细胞状态下传代。

A12.在宫崎等的论文中(Nature communications, 3(1236), 1-10, 201),5 次传代后(30 天后)的细胞数扩增效率约为基质胶的 200 倍。


参考文献


分类

文献信息

主题

人多能干细胞(hPSC)的确立

Miyazaki et al. Nat. Commun.3:1236, (2012)

证实用作hPSC的培养基质的有效性

Nakagawa et al. Sci. Rep4:3594, (2014)

确立医疗等级的hPSC

Takashima et al. Cell.158(6):1254-69, (2014)

促进向hPSC的基质状态的转移

Miyazaki et al. Sci. Rep.7:41165, (2017)

采用无需涂层操作的添加法培养hPSC

Sekine et al. Stem Cell Res.24:40-43, (2017)

确立疾病特异性的hPSC

Tan et al. Stem Cell Res24:12-15, (2017)

Ishida et al. Sci. Rep8(1), 310, (2018)

利用hPSC的基因编辑建立遗传性疾病模型

Kim et al. Nature Communications9(1), 939, (2018)

Sakai-Takemura et al. Sci. Rep8, 6555, (2018)

悬浮培养由hPSC分化的肌肉前体细胞

由hPSC分化衍生的细胞

Doi et al. Stem Cell Reports2(3):337-50, (2014)

多巴胺产生神经元

Ishikawa et al. Hum. Mol. Genet.25(23):

5188-5197, (2016)

Nishimura et al. Stem Cell Reports.6(4):

511-524, (2016)

Samata et al. Nat. Commun7:13097, (2016)

Kikuchi et al. Nature548(7669):592-596,   (2017)

Morizane et al. Nat. Commun.8(1):385, (2017)

Kikuchi et al. J. Neurosci. Res.95(9):1829-37, (2017)

Goparaju et al. Sci. Rep7:42367, (2017)

运动神经元

Burridge et al. Nat. Methods.11(8):855-60,    (2014)

心肌细胞

Sougawa et al. Sci. Rep,8(1), 3726, (2018)

Yamauchi et al. BBRC495(1), 1278-1284,      (2018)

心室肌细胞

Akiyama et al. Sci. Rep8(1), 1189, (2018)

骨骼肌细胞

Saito et al. Stem Cell Res Ther9(1), 12, (2018)

成骨细胞

Uchimura et al. Stem cell research25, 98-106, (2017)

成肌细胞

Hayashi et al. Nature.531(7594):376-80, (2016)

视觉细胞

Hayashi et al. Nat. Protoc.12(4):683-696, (2017)

角膜上皮细胞

Takayama et al. BBRC474(1):91-96, (2016)

胆管上皮细胞

Takayama et al. Hepatol Commun,1(10), 1058-1069, (2017)

肝实质细胞

Takayama et al. Biomaterials, (2018)

Takebe et al. Cell Reports21(10), 2661-2670, (2017)

肝细胞

Tan et al. Stem Cell Reports11:1-11, (2018)

Camp et al. Nature. 546(7659):533-38, (2017)

定形内胚层细胞

Zhang et al. Stem Cell Reports10(2), 1–14, (2018)

后内胚层前体细胞

Tanigawa et al. Cell reports15(4), 801-813, (2016)

肾单位前体细胞(胎肾细胞)

Musah et al. Nat.Biomed.Eng.1:0069, (2017)

肾小球上皮细胞

Musah et al. Nature protocols,13(7):1662,    (2018)

Mae et al. BBRC495(1), 954-961, (2018)

输尿管芽组织

Oshima et al. BBRC497(2), 719-725, (2018)

血细胞・血管内皮常见前体细胞

Taguchi et al. Cell Stem Cell21, (2017) 

*培养hPSC用于分化肾单位前体细胞(胎肾细胞)

Kawamura et al. Stem Cell Reports.6(3):312-20,(2016)

*培养hPSC用于分化心肌细胞

Sasaki et al. Cell Stem Cell.17(2):178-94, (2015)

*培养hPSC用于分化生殖细胞

Kojima et al. Cell Stem Cell.21(4):517-532,    (2017)

Furuta et al. PLoS One9(12):e112291, (2014)

*培养hPSC用于分化间充质细胞

人原代细胞的培养

Okumura et al. Invest. Ophth. Vis. Sci.56(5):2933-42, (2015)

人角膜内皮细胞

Hongo et al. Invest. Ophth. Vis. Sci.58(9):3325-34, (2017)

Polisetti et al. Sci. Rep.7(1):5152, (2017)

人角膜边缘上皮前体细胞

Ishii et al. Stem Cell Reports10, 1-15, (2018)

卫星细胞

层粘连蛋白-整合素相互作用的分子机制

Ido et al. J. Biol. Chem282(15): 11144-54,    (2007)

Ido et al. J. Biol. Chem.283(42): 28149-57,    (2008)

Taniguchi et al. J. Biol. Chem284(12): 7820-31, (2009)

Taniguchi et al. BBRC.487(3): 525-531, (2017)

Takizawa et al. Sci Adv.3(9) :e1701497, (2017)

英文论文

[1]

Ayabe, H., Anada, T., Kamoya, T., Sato, T., Kimura, M., Yoshizawa, E., Kikuchi, Shunyuu., Ueno, 

Yasuharu., Sekine, keisuke., J. Gray Camp., Treutlein, B., Ferguson, Autumn., Suzuki, Osamu., 

Takede, Takanori.. Optimal Hypoxia Regulates Human iPSC-Derived Liver Bud Differentiation 

through Intercellular TGFB Signaling. Stem Cell Reports11, 1-11, (2018)

 

[2]

Musah, S., Dimitrakakis, N., Camacho, D. M., Church, G. M., Ingber, D. E.. Directed differentiation 

of human induced pluripotent stem cells into mature kidney podocytes and establishment of a 

lomerulus Chip. Nature protocols13(7), 1662, (2018)

 

[3]

Ishii, K., Sakurai, H., Suzuki, N., Mabuchi, Y., Sekiya, I., Sekiguchi, K., Akazawa, C.. Recapitulation of Extracellular LAMININ Environment Maintains Stemness of Satellite Cells In Vitro. Stem Cell 

Reports10, 1-15, (2018)

 

[4]

Ishida, K., Xu, H., Sasakawa, N., Lung, M. S. Y., Kudryashev, J. A., Gee, P., & Hotta, A.. Site-specific 

randomization of the endogenous genome by a regulatable CRISPR-Cas9 piggyBac system in 

human cells. Scientific Reports8(1), 310, (2018)

 

[5]

Takayama, K., Hagihara, Y., Toba, Y., Sekiguchi, K., Sakurai, F., Mizuguchi, H.. Enrichment of high-

functioning human iPS cell-derived hepatocyte-like cells for pharmaceutical research. 

Biomaterials, (2018)

 

[6]

Akiyama, T., Sato, S., Chikazawa-Nohtomi, N., Soma, A., Kimura, H., Wakabayashi, S., Ko, S.B., Ko, M. S.. Efficient differentiation of human pluripotent stem cells into skeletal muscle cells by 

combining RNA-based MYOD1-expression and POU5F1-silencing. Scientific Reports8(1), 1189, (2018)

 

[7]

Saito, A., Ooki, A., Nakamura, T., Onodera, S., Hayashi, K., Hasegawa, D., Okudaira,T., Watanabe, K., Kato, H., Onda, T., Watanabe, A., Kosaki, K., Nishimura, K., Ohtaka, Manami., Nakanishi, M., 

Sakamoto, T., Yamaguchi, A., Sueishi, K., Azuma, T.. Targeted reversion of induced pluripotent 

stem cells from patients with human cleidocranial dysplasia improves bone regeneration in a rat 

calvarial bone defect model. Stem Cell Research & Therapy9(1), 12, (2018)

 

[8]

Yamauchi, K., Li, J., Morikawa, K., Liu, L., Shirayoshi, Y., Nakatsuji, N., Elliott, A. D., Hisatome, I., 

Suemori, H..Isolation and characterization of ventricular-like cells derived from NKX2-5 eGFP/w 

and MLC2v mCherry/w double knock-in human pluripotent stem cells. Biochemical and 

Biophysical Research Communications495(1), 1278-1284, (2018)

 

[9]

Mae, S., Ryosaka, M., Toyoda, T., Matsuse, K., Oshima, Y., Tsujimoto, H., Okumura, S., Shibasaki, A., Osafune, K.. Generation of branching ureteric bud tissues from human pluripotent stem cells. 

Biochemical and biophysical research communications495(1), 954-961, (2018)

 

[10]

Kagihiro, M., Fukumori, K., Aoki, T., Ungkulpasvich, U., Mizutani, M., Viravaidya-Pasuwat, K.,& 

Kino-oka, M.. Kinetic analysis of cell decay during the filling process: Application to lot size 

determination in manufacturing systems for human induced pluripotent and mesenchymal stem cells. Biochemical Engineering Journal131, 31-38, (2018)

 

[11]

Zhang, R. R., Koido, M., Tadokoro, T., Ouchi, R., Matsuno, T., Ueno, Y., Sekine, K., Takebe, T., 

Taniguchi, H.. Human iPSC-Derived Posterior Gut Progenitors Are Expandable and Capable of 

Forming Gut and Liver Organoids. Stem Cell Reports10(2), 1?14, (2018)

 

[12]

Oshima, K., Saiki, N., Tanaka, M., Imamura, H., Niwa, A., Tanimura, A., Nagahashi, A., Hirayama, A., Okitac, K., Hotta, A., Kitayama, S., Osawa, M., Kaneko, S., Watanabe, A., Asaka, I., Fujibuchi, W., 

Imai, K., Yabe, H., Kamachi, Y., Hara, J., Kojima, S., Tomita, M., Soga, T., Noma, T., Nonoyama, S., 

Nakahata, T., Saito, MK.. Human AK2 links intracellular bioenergetic redistribution to the fate of 

hematopoietic progenitors. Biochemical and Biophysical Research Communications497(2), 719-

725, (2018)

 

[13]

Sougawa, N., Miyagawa, S., Fukushima, S., Kawamura, A., Yokoyama, J., Ito, E., Harada, A., 

Okimoto, K., Mochisuki-Oda, N., Saito, A., Sawa, Y.. Immunologic targeting of CD30 eliminates 

tumourigenic human pluripotent stem cells, allowing safer clinical application of hiPSC-based cell therapy. Scientific Reports8(1), 3726, (2018)

 

[14]

Yasuda, S. Y., Ikeda, T., Shahsavarani, H., Yoshida, N., Nayer, B., Hino, M., Vartak-Sharma, N.,

Suemori, H., Hasegawa, K.. Chemically defined and growth-factor-free culture system for the 

expansion and derivation of human pluripotent stem cells. Nature Biomedical Engineering2(3), 

173, (2018)

 

[15]

Kim, S. I., Matsumoto, T., Kagawa, H., Nakamura, M., Hirohata, R., Ueno, A., Ohishi, M., Sakuma, T., Soga, T., Yamamoto, T., Woltjen, K.. Microhomology-assisted scarless genome editing in human 

iPSCs. Nature Communications9(1), 939, (2018)

 

[16]

Hayashi, R., Ishikawa, Y., Katori, R., Sasamoto, Y., Taniwaki, Y., Takayanagi, Tsujikawa, M., 

Sekiguchi, K., Quantock, A. J., Nishida, K. . Coordinated generation of multiple ocular-like cell 

lineages and fabrication of functional corneal epithelial cell sheets from human iPS cells. Nature 

Protocols12(4), 683-696, (2017)

 

[17]

Kikuchi, T., Morizane, A., Okita, K., Nakagawa, M., Yamakado, H., Inoue, H., Takahashi, R., 

Takahashi, J. . Idiopathic Parkinson's disease patient‐derived induced pluripotent stem cells 

function as midbrain dopaminergic neurons in rodent brains. Journal of Neuroscience Research

95(9),1829-37, (2017)

 

[18]

Miyazaki, T., Isobe, T., Nakatsuji, N., & Suemori, H. . Efficient Adhesion Culture of Human 

Pluripotent Stem Cells Using Laminin Fragments in an Uncoated Manner. Scientific Reports7

(41165), 1-8, (2017)

 

[19]

Goparaju, S. K., Kohda, K., Ibata, K., Soma, A., Nakatake, Y., Akiyama, T., Wakabayashi, S., 

Matsushita, M., Sakota, M., Kimura, H., Yuzaki, M., Shigeru B. H. Ko & Minoru S. H. Ko. . Rapid 

differentiation of human pluripotent stem cells into functional neurons by mRNAs encoding 

transcription factors. Scientific Reports7, 42367, (2017)

 

[20]

Musah, S., Mammoto, A., Ferrante, C. T., Jeanty, S.S., Hirano-Kobayashi, M., Mammoto, T., Roberts, K., Chung, S., Novak, R., Ingram, M., Fatanat-Didar, T., Koshy, S., Weaver, C. J., Church, M. G., 

Ingber, F. D. . Mature induced-pluripotent-stem-cell-derived human podocytes reconstitute 

kidney glomerular-capillary-wall function on a chip. Nature Biomedical Engineering1 (0069), 

(2017)

 

[21]

Camp, J. G., Sekine, K., Gerber, T., Loeffler-Wirth, H., Binder, H., Gac, M., Kanton, S., Kageyama, J., Damm, G., Seehofer, D., Belicova, L., Barsacchi, M., Barsacchi, R., Okuda, R., Yoshizawa, E., Kimura, M., Ayabe, H., Taniguchi, H., Takebe, T., & Belicova, L.. Multilineage communication regulates 

human liver bud development from pluripotency. Nature546, 533-538, (2017)

 

[22]

Polisetti, N., Sorokin, L., Okumura, N., Koizumi, N., Kinoshita, S., Kruse, F. E., and Schlotzer-

Schrehardt, U. Laminin-511 and-521-based matrices for efficient ex vivo-expansion of human 

limbal epithelial progenitor cells. Scientific Reports7, 5152, (2017)

 

[23]

Hongo, A., Okumura, N., Nakahara, M., Kay, E. P., & Koizumi, N.. The Effect of a p38 Mitogen-

Activated Protein Kinase Inhibitor on Cellular Senescence of Cultivated Human Corneal 

Endothelial CellsEffect of a p38 MAPK Inhibitor on Corneal Endothelial Cells. Investigative Ophthalmology & Visual Science58(9), 3325-3334, (2017)

 

[24]

Taniguchi, Y., Li, S., Takizawa, M., Oonishi, E., Toga, J., Yagi, E., & Sekiguchi, K. Probing the acidic 

residue within the integrin binding site of laminin-511 that interacts with the metal ion-

dependent adhesion site of α6β1 integrin. Biochemical and Biophysical Research 

Communications487(3), 525-531, (2017)

 

[25]

Sekine, S. I., Kondo, T., Murakami, N., Imamura, K., Enami, T., Shibukawa, R., Tsukita, K., Funayama, M., Inden, M., Kurita, H., Hozumi, I., Inoue, H.. Induced pluripotent stem cells derived from a 

patient with familial idiopathic basal ganglia calcification (IBGC) caused by a variant in SLC20A2 

gene. Stem Cell Research, (2017)

 

[26]

Tan, G. W., Kondo, T., Murakami, N., Imamura, K., Enami, T., Tsukita, K., Shibukawa, R., Funayama, M., Matsumoto, R., Ikeda, I., Takahashi, R., Inoue, H.. Induced pluripotent stem cells derived from an autosomal dominant lateral temporal epilepsy (ADLTE) patient carrying S473L mutation in 

leucine-rich glioma inactivated 1 (LGI1). Stem Cell Research, (2017)

 

[27]

Sato-Nishiuchi, R., Li, S., Ebisu, F., Sekiguchi, K.. Recombinant laminin fragments endowed with 

collagen-binding activity: A tool for conferring laminin-like cell-adhesive activity to collagen 

matrices. Matrix Biology, (2017)

 

[28]

Kikuchi, T., Morizane, A., Doi, D., Magotani, H., Onoe, H., Hayashi, T., Mizuma, H., Takara, S., 

Takahashi, R., Inoue, H., Morita, S., Yamamoto, M., Okita, K., Nakagawa, M., Parmar, M., Takahashi, J.. Human iPS cell-derived dopaminergic neurons function in a primate Parkinson's disease 

model. Nature548, 592-596, (2017)

 

[29]

Takizawa, M., Arimori, T., Taniguchi, Y., Kitago, Y., Yamashita, E., Takagi, J., Sekiguchi, K.. 

Mechanistic basis for the recognition of laminin-511 by α6β1 integrin. Science Advances3(9), 

e1701497, (2017)

 

[30]

Morizane, A., Kikuchi, T., Hayashi, T., Mizuma, H., Takara, S., Doi, H., Mawatari, A., Glasser, M.F., 

Shiina, T., Ishigaki, H., Itoh, Y., Okita, K., Yamasaki, E., Doi, D., Onoe, H., Ogasawara, K., Yamanaka, S., and Takahashi, J. . MHC matching improves engraftment of iPSC-derived neurons in non-

human primates. Nature Communications8(1), 385, (2017)

 

[31]

Kikuchi, T., Morizane, A., Doi, D., Magotani, H., Onoe, H., Hayashi, T., Mizuma, H., Takara, S., 

Takahashi, R., Inoue, H., Morita, S., Yamamoto, M., Okita, K., Nakagawa, M., Parmar, M., Takahashi, J. . human ips cell-derived dopaminergic neurons function in a primate Parkinson's disease 

model. Nature548(7669), 592-596, (2017)

 

[32]

Kojima, Y., Sasaki, K., Yokobayashi, S., Sakai, Y., Nakamura, T., Yabuta, Y., Nakaki, F., Nagaoka, S., Woltjen, K., Hotta, A., Yamamoto, T., Saitou, M.. Evolutionarily Distinctive Transcriptional and 

Signaling Programs Drive Human Germ Cell Lineage Specification from Pluripotent Stem 

Cells. Cell Stem Cell21(4), 517-532.e5, (2017)

 

[33]

Taguchi, A., & Nishinakamura, R.. Higher-Order Kidney Organogenesis from Pluripotent Stem 

Cells. Cell Stem Cell21. (2017)

 

[34]

Takebe, T., Sekine, K., Kimura, M., Yoshizawa, E., Ayano, S., Koido, M., Funayama, S., Nakanishi, N., Hisai, T., Kobayashi, T., Kasai, T., Kitada, R., Mori, A., Ayabe, H., Ejiri, Y., Amimoto, N., Yamazaki, Y., Ogawa, S., Ishikawa, M., Kiyota, Y., Sato, Y., Nozawa, K., Okamoto, S., Ueno, Y., Kasai, T.. Massive 

and Reproducible Production of Liver Buds Entirely from Human Pluripotent Stem Cells. Cell 

Reports21(10), 2661-2670, (2017)

 

[35]

Uchimura, T., Otomo, J., Sato, M., Sakurai, H.. A human iPS cell myogenic differentiation system 

permitting high-throughput drug screening. Stem cell research25, 98-106, (2017)

 

[36]

Sougawa, N., Miyagawa, S., Fukushima, S., Saito, A., Yokoyama, J., Kitahara, M., Harada, A., Sato-

Nishiuchi, R., Sekiguchi, K., Sawa, Y.. Novel Stem Cell Niches Laminin 511 Promotes Functional 

Angiogenesis Through Enhanced Stem Cell Homing by Modulating" Stem Cell Beds" in the Failed Heart.Circulation136(1), A15587, (2017)

 

[37]

Samata, B., Doi, D., Nishimura, K., Kikuchi, T., Watanabe, A., Sakamoto, Y., Kakuta, J., Ono, Y.,& 

Takahashi, J.. Purification of functional human ES and iPSC-derived midbrain dopaminergic 

progenitors using LRTM1. Nature Communications7(13097), 1-11, (2016)

 

[38]

Hayashi, R., Ishikawa, Y., Sasamoto, Y., Katori, R., Nomura, N., Ichikawa, T., Araki, S., Soma, T., 

Kawasaki, S., Sekiguchi, K., Tsujikawa, M., Nishida, K., & Quantock, A. J.. Co-ordinated ocular 

development from human iPS cells and recovery of corneal function. Nature531(7594), 376-380, (2016)

 

[39]

Matsuno, K., Mae, S. I., Okada, C., Nakamura, M., Watanabe, A., Toyoda, T., Uchida, E., Osafune, K.. Redefining definitive endoderm subtypes by robust induction of human induced pluripotent 

stem cells.Differentiation; research in biological diversity, (2016)

 

[40]

Nishimura, K., Doi, D., Samata, B., Murayama, S., Tahara, T., Onoe, H., & Takahashi, J.. Estradiol 

Facilitates Functional Integration of iPSC-Derived Dopaminergic Neurons into Striatal Neuronal 

Circuits via Activation of Integrin α5β1. Stem cell reports6(4), 511-524, (2016)

 

[41]

Takayama, K., Mitani, S., Nagamoto, Y., Sakurai, F., Tachibana, M., Taniguchi, Y., Sekiguchi,K., 

Mizuguchi, H.. Laminin 411 and 511 promote the cholangiocyte differentiation of human induced pluripotent stem cells. Biochemical and biophysical research communications474(1), 91-96, (2016)

 

[42]

Kawamura, T., Miyagawa, S., Fukushima, S., Maeda, A., Kashiyama, N., Kawamura, A., Miki, K., 

Okita, K., Yoshida, Y., Shiina, T., Ogasawara, K., Miyagawa, S., Toda, K., Okuyama, H., Sawa,Y.. 

Cardiomyocytes derived from MHC-homozygous induced pluripotent stem cells exhibit reduced allogeneic immunogenicity in MHC-matched non-human primates. Stem cell reports, 6(3), 312-

320, (2016).

 

[43]

Tanigawa, S., Taguchi, A., Sharma, N., Perantoni, A. O., & Nishinakamura, R.. Selective in vitro 

propagation of nephron progenitors derived from embryos and pluripotent stem cells. Cell 

reports15(4), 801-813, (2016)

 

[44]

Okumura, N., Kakutani, K., Numata, R., Nakahara, M., Schlotzer-Schrehardt, U., Kruse, F., Kinoshita. K., Koizumi, N.. Laminin-511 and-521 Enable Efficient In Vitro Expansion of Human Corneal 

Endothelial CellsLaminin-511 and-521 Enable Expansion of HCECs. Investigative ophthalmology & visual science56(5), 2933-2942, (2015)

 

[45]

Sasaki, K., Yokobayashi, S., Nakamura, T., Okamoto, I., Yabuta, Y., Kurimoto, K., Ohta, H., Moritoki, Y., Iwatani, C., Tsuchiya, H., Nakamura, S., Sekiguchi, K., Sakuma, T., Yamamoto, T., Mori, T., 

Woltjen, K., Nakagawa, M., Yamamoto, T., Takahashi, K., Yamanaka, S., Saitou, M.. Robust in vitro 

induction of human germ cell fate from pluripotent stem cells. Cell stem cell17(2), 178-194, 

(2015)

 

[46]

Nakagawa, M., Taniguchi, Y., Senda, S., Takizawa, N., Ichisaka, T., Asano, K., Morizane, A., Doi, D., 

Takahashi, J., Nishizawa, M., Yoshida, Y., Toyoda, T., Osafune, K., Sekiguchi, K., & Yamanaka, S. . A novel efficient feeder-free culture system for the derivation of human induced pluripotent stem 

cells. Scientific reports4(3594), 1-7, (2014)

 

[47]

Doi, D., Samata, B., Katsukawa, M., Kikuchi, T., Morizane, A., Ono, Y., Sekiguchi, K., Nakagawa, M., Parmar, M., Takahashi, J.. Isolation of human induced pluripotent stem cell-derived dopaminergic progenitors by cell sorting for successful transplantation. Stem cell reports2(3), 337-350, (2014)

 

[48]

Takashima, Y., Guo, G., Loos, R., Nichols, J., Ficz, G., Krueger, F., Oxley, D., Santos, F., Clarke, J., 

Mansfield, W., Reik, W., Bertone, P., Smith, A.. Resetting transcription factor control circuitry 

toward ground-state pluripotency in human. Cell158(6), 1254-1269, (2014)

 

[49]

Fukuta, M., Nakai, Y., Kirino, K., Nakagawa, M., Sekiguchi, K., Nagata, S., Matsumoto, Y., 

Yamamoto, T., Umeda, K., Heike, T., Okumura, N., Koizumi, N., Sato, T., Nakahata, T., Saito, M., 

Otsuka, T., Kinoshita, S., Ueno, M., Ikeya, M., Toguchida, J. . Derivation of mesenchymal stromal 

cells from pluripotent stem cells through a neural crest lineage using small molecule compounds with defined media. PloS one9(12), e112291, (2014)

 

[50]

Burridge, P. W., Matsa, E., Shukla, P., Lin, Z. C., Churko, J. M., Ebert, A. D., Lan, F., Diecke, S., Huber, B., Mordwinkin, N. M., Plews, J. R., Abilez, O. J., Cui, B., Gold, J. D., & Wu, J. C. . Chemically defined generation of human cardiomyocytes. Nature methods11(8), 855-860, (2014)

 

[51]

Miyazaki, T., Futaki, S., Suemori, H., Taniguchi, Y., Yamada, M., Kawasaki, M., Hayashi, M., Kumagai, H., Nakatsuji, N., Sekiguchi, K., & Kawase, E. . Laminin E8 fragment support efficient adhesion and expansion of dissociated human pluripotent stem cells. Nature communications3(1236), 1-10, 

(2012)

 

[52]

Taniguchi, Y., Ido, H., Sanzen, N., Hayashi, M., Sato-Nishiuchi, R., Futaki, S., & Sekiguchi, K. . The C-terminal region of laminin β chains modulates the integrin binding affinities of laminins. Journal 

of Biological Chemistry284(12), 7820-7831, (2009)

 

[53]

Ido, H., Nakamura, A., Kobayashi, R., Ito, S., Li, S., Futaki, S., & Sekiguchi, K. . The requirement of 

the glutamic acid residue at the third position from the carboxyl termini of the laminin γ chains in integrin binding by laminins. Journal of Biological Chemistry282(15), 11144-11154, (2007)

胶原蛋白,让细胞突破空间局限

胶原蛋白(Collagen)是结缔组织和内脏器官外基质的主要成分,胶原蛋白种类很多,常见类型包括I型、II型、III型、IV型等等。其中,I型胶原蛋白(CollagenTypeI)因广泛分布于皮肤、骨骼、肌腱及其他纤维结缔组织中而常常被应用于细胞的体外培养。当用做凝胶基质时,胶原蛋白有助于增强细胞形态特异性和维持细胞功能,促进细胞贴壁等作用,同时还是一种天然粘附剂。

传统细胞培养方式主要是让细胞生长在玻璃或塑料平面上,细胞只能沿二维平面延伸,这种培养方式称为2D培养。由于某些原代细胞如神经细胞以及干细胞等难以在常规平面附着,需要包被胶原作为促进细胞贴壁的基质,所以胶原包被常常在原代细胞和干细胞2D培养中发挥着重要作用。

与之相比,由胶原蛋白配置的3D固体凝胶形成的三维立体网状结构,能更真实地模拟体内组织结构及微环境,满足复杂细胞组织间相互作用,为细胞提供更好的生长和分化条件。因此,细胞3D培养比传统2D培养的应用前景更为广泛,3D培养主要用于以下几个方面:

ü 肿瘤研究应用 3D培养能更好地代表组织结构和细胞微环境,三维癌症模型主要目标是缩小二维细胞系、动物模型和临床研究之间的差距,能够更加真实的模拟体内肿瘤微环境。

ü 药物药理研究应用 3D细胞培养在早期药物发现中将有广泛应用,如疾病建模、目标识别和验证、筛选、药物疗效和安全评估等。

 

ü 干细胞研究应用 三维生物系统可以提高人类胚胎干细胞衍生的多能干细胞和成人成体干细胞植入体内后的生存率和再生能力,使干细胞分化在疾病建模和再生医学中的潜力得以发挥。

Advanced BioMatrix(以下简称ABM)是美国知名的胶原蛋白生产公司,拥有25年的研发和制造经验,为满足研究人员不断发展的需求,致力于为组织工程、细胞分析及细胞增殖等研究领域提供优质稳定的产品。

 

ABM热销的三款I型胶原蛋白纯度都达到95%以上,且均通过无菌检验,非常适用于细胞培养器皿包被和制备3D凝胶。

胶原蛋白,让细胞突破空间局限