转染江湖风起云涌，群雄纷争不断。近年来，病毒载体在基因/细胞治疗领域的广泛应用，让市场对病毒包装的质量和效率要求日益提升。Mirus经历两年闭关修炼，专攻AAV与Lentivirus病毒载体包装制备的新产品TransIT?-VirusGEN? Transfection Reagent终于问世，与各路转染高手过招，精彩纷呈。欲知详情，且看下文分解。

1.TransIT?-VirusGEN?招式解析
TransIT?-VirusGEN? 依然采用Mirus专利多聚物转染方法，无动物源成分，主要针对腺相关病毒（AAV）包装而研发，对部分慢病毒（Lentivirus）包装系统也有很强优势，这两种病毒都需要HEK 293细胞系生产，所以该转染试剂适用于包括悬浮和贴壁的各种类型HEK 293细胞系，能大幅提高转染效率和病毒产量，从而在有限的时间和资源里实现较大收获。

2.AAV包装实战分析

在相同培养条件下，用不同转染试剂分别在悬浮的293-F和贴壁的293T/17两种细胞系共转pAAV-hrGFP, pAAV-RC, and pAAV-Helper三种质粒包装AAV重组病毒，然后利用GFP标签在HT1080细胞上检测AAV滴度。结果显示，不论是悬浮还是贴壁293细胞系，采用TransIT?-VirusGEN?转染产出的AAV滴度远远高于其他几款转染试剂。

3.慢病毒包装实战分析

在相同培养条件下，用不同转染试剂分别在悬浮的293-F和贴壁的293T/17两种细胞系转染pLKO.1-puro-CMV-TurboGFP? 穿梭质粒 和慢病毒包装质粒Mix powered（MISSION?）包装Lentivirus重组病毒，然后利用GFP标签在293T/17细胞上检测Lentivirus滴度。结果显示，不论是悬浮还是贴壁293细胞系，采用TransIT?-VirusGEN?转染产出的重组慢病毒滴度都远远高于其他几款转染试剂。

4.转染体系放大可提高AAV产量

采用TransIT?-VirusGEN?在6孔板和250mL培养瓶中转染293-F悬浮细胞系包装AAV，在6孔板和10cm平皿中转染293T/17贴壁细胞系包装AAV，两组实验在不同大小培养体系产出的重组病毒滴度比较结果显示，当体系从6孔板→250mL培养瓶（或6孔板→10cm平皿）放大后，病毒产量也会相应提升20%左右，表明该转染试剂适用于包装重组病毒的工艺放大。

产品规格

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